Оценка биологической эффективности (стимулирующих и биоконтролирующих свойств) биопрепарата трихоплант

Биологическая эффективность | справочник Пестициды.ru

Чтобы определить биологическую эффективность пестицидов, на части поля оставляют контрольный участок (без обработки); соответственно, в условиях лаборатории выделяют необрабатываемые пестицидами колонии (группы) вредных организмов. Учет ведется по повторностям (учетным площадкам, учетным деревьям или кустарникам, пробам листьев или срезаемых растений и т.п.).[4]

В простейших случаях (в лабораторных или в полевых условиях, когда численность особей между учетами в контроле практически не изменяется) биологическую активность акарицида, инсектицида или родентицида рассчитывают по формуле Аббота:

С = 100 (А-В) / А,

где С – процент смертности особей вредителей,

А – средняя численность особей до обработки,

В – средняя численность особей после обработки.[4]

Формула Аббота применяется, если вредители ведут скрытный образ жизни, и их присутствие можно учесть только по числу поврежденных растений либо их частей (бутонов, корнеплодов, клубней, цветков и пр.).

В этом случае за А принимают количество поврежденных растений (частей растения) в контроле, за В – количество поврежденных растений (частей растения) в опытном варианте.

То же самое касается определения биологической эффективности родентицидов: в этом случае за А принимается число жилых нор до обработки, за В – число нор, открывшихся после обработки.[4]

В тех случаях, когда можно зафиксировать число погибших организмов, например, особей колорадского жука на плантации, тлей и клещей в лабораторном опыте в изоляторах, биологическую эффективность определяют при сопоставлении с контролем по формуле:

С = 100 (Ва-Аb) / Аа,

где С – процент смертности вредителей с поправкой на контроль;

А и а – общее число особей в опытном варианте и контроле соответственно;

В и b – количество погибших особей в опытном варианте и контроле соответственно.[4]

Для получения объективных данных нередко требуется сопоставление численности вредителя на обработанном участке с контрольным участком. В этом случае корректнее пользоваться следующей формулой:

С = 1 – 100 (АК1) / БК2,

где А – число особей вредителя в опытном варианте до обработки;

Б – число живых особей в контроле в предварительном учете (до обработки);

К1 – число живых особей вредителя в опытном варианте после обработки;

К2 – число живых особей в последующем учете (после обработки).[4]

В зависимости от образа жизни вредителей, существуют различные способы определения их численности. При открытом образе жизни подсчет насекомых проводят непосредственно на растениях, обычно на 100 растениях, расположенных равномерно по диагонали участка, или в 20 пробах, на 5 растениях в каждой пробе.[1][5]

Когда насекомые находятся не только на растениях, но и на поверхности почвы (вредная черепашка, жуки свекловичных долгоносиков, гусеницы подгрызающих совок и др.

), их подсчитывают на 8-20 пробных площадках по 0,25 м2, расположенных равномерно по диагонали участка.

С этой целью используют деревянную квадратную рамку (50х50 см), которую накладывают на поверхность почвы, и подсчитывают насекомых в пределах этой рамки.[1][5]

Численность подвижных насекомых (блошки, саранчовые, некоторые виды клопов, мух и др.) учитывают с помощью сачка. Над растениями учетной площадки делают 50 взмахов сачком (каждый взмах в одну сторону с охватом растений на 90 0). По окончании кошения насекомых вынимают из сачка и подсчитывают сразу или после их предварительного замаривания в морилке.[1][5]

Если на растениях очень много вредителей (например, тли, червецы и др.), то их количество выражают в баллах, и эффективность определяется сравнением среднего балла заселенности до и после обработки. Учет также проводят на 50-100 растениях учетного участка, расположенных по его диагонали. Для определения заселенности растений тлями лучше всего пользоваться шестибалльной шкалой:[1][5]

Шкала заселенности растений тлями
Оценка (балл) % заселения растения
1 балл – отсутствие вредителя
2 балла – незначительное заселение следы – 6,2
3 балла – слабое заселение 6,3 – 12,5
4 балла – среднее заселение 12,6 – 25,0
5 баллов – сильное заселение 25,1 – 50,0
6 баллов – очень сильное заселение > 50

При химической обработке почвы против обитающих в ней насекомых-вредителей (хрущи, проволочники, хлебная жужелица и др.

) эффективность должна учитываться по почвенным пробам с контрольного и обработанного участков, с последующим послойным анализом почвы (просеянной или промытой через сита).

После подсчета всех найденных насекомых определяют их смертность. На каждом углу в шахматном порядке берут 8 – 10 проб (0,25 м2 на глубину 0,4 м).[1][5]

Определение эффективности химических мер борьбы с вредителями плодовых деревьев проводят на 10 учетных деревьях, расположенных равномерно по диагонали сада. Методика определения численности зависит от вида насекомых.

Так, оценку эффективности инсектицидов против яблонной плодожорки проводят главным образом путем анализа повреждения падалицы и съемного урожая гусеницами плодожорки.

В некоторых случаях проводят стряхивание вредителей на полотно (яблонный цветоед, долгоносики).[1][1]

Для учета поврежденности растений вредителями на учетном участке осматривают определенное число растений (50-100) и оценивают по четырехбалльной шкале степень повреждения каждого растения:

балл 0 – отсутствие повреждений,

балл 1 – небольшие повреждения (не более 25% листовой поверхности);

балл 2 – значительные повреждения (до 50% листьев);

балл 3 – растения сильно повреждены (более 50 % листовой поверхности повреждено насекомыми).[1]

При учете поврежденности генеративных органов подсчитывают число поврежденных и неповрежденных бутонов, цветов, завязей, плодов на учетных растениях опытных и контрольных участков.[1]

При учете поврежденности корневой системы определяют количество погибших и сильно угнетенных растений из общего числа просмотренных растений.[1]

Основными показателями биологической эффективности применения акарицидов, так же, как и инсектицидов, являются величины снижения численности клещей или поврежденности ими растений на определенный срок учета, в сравнении с контролем или в сравнении с численностью клещей до обработки (с поправкой на контроль).[1]

В зависимости от фазы развития клещей и повреждаемых ими культур, учет их численности различен. На полевых культурах (хлопчатник, соя и др.) чаще всего пользуются методом непосредственного подсчета количества клещей (взрослых и личинок) с помощью 7-10 кратной лупы на 50-100 листьях растений, равномерно расположенных по диагонали учетного участка.[1]

Учет проводят до и после обработки на контрольном и обрабатываемом участке. Также применяют метод модельных листьев и растений, которые выделяют перед обработкой, отмечая их номерными этикетками и используя для определения численности клещей до обработки и после нее.

На плодовых деревьях учет количества клещей проводят на десяти учетных деревьях, осматривая по десять листьев с четырех сторон дерева.

Если клещи обладают ярко окрашенной полостной жидкостью (например, буровой или красный плодовый клещи), то для учета их численности может быть применен метод отпечатков.

Для этого сорванные учетные листья нужно положить между листами белой фильтрованной бумаги и прокатить по ним резиновым валиком. Раздавленные клещи оставят на бумаге характерные пятна, по числу которых определяют количество клещей.

Эффективность препаратов, применяемых против зимующих яиц плодовых клещей, оценивают на учетных ветках деревьев, которые заселены яйцами клещей.

Учетные ветки с численностью от 100 до 200 яиц отмечают масляной краской, считывают количество пустых и здоровых яиц с помощью семикратной лупы до обработки и проводят наблюдения за выходом клещей после обработки деревьев акарицидом.

По окончании полного выхода клещей из яиц ветки срезают и подсчитывают с помощью бинокуляра число вышедших клещей.[1]

Биологическую эффективность фунгицидов рассчитывают в основном по двум показателям: распространенности болезни и интенсивности ее развития (степени поражения).

Распространенность болезни Р (%) рассчитывают по формуле:

Р = n / N • 100,

где n – количество растений в пробе с признаками заболеваний;

N – общее число проанализированных растений в пробе.[4][1]

В отношении распространенности болезни в сравнении с контролем биологическую эффективность фунгицида (%) рассчитывают по модифицированной формуле Аббота:

С = 100 • (Р – р) / Р,

где Р и р – распространенность болезни, соответственно, в контроле и опытном варианте.

Интенсивность развития болезни (степень поражения растений болезнью) оценивается в процентах или баллах. Наиболее распространена следующая шкала степени пораженности:

0 – отсутствие признаков заболевания;

1 – поражено до 10 % поверхности растения или его отдельных органов;

2 – поражено 11 – 25 % поверхности растения или его отдельных органов;

3 – более 50 % поверхности растения или его отдельных органов получили поражения.[4]

Развитие болезни R (%), отражающее среднюю степень поражения территории или поля, рассчитывают по формуле:

R = 100 • Σ (nb) / NK,

где n – количество пораженных растений;

b – соответствующий балл их поражения;

N – общее количество растений в пробе,

K – высший балл шкалы учета.[4]

Биологическую активность фунгицидов с учетом развития степени болезни в опытном варианте и контроле также рассчитывают по модифицированной формуле Аббота.[4]

Для определения биологической эффективности гербицидов используются количественно-весовой и количественный методы учета сорных растений. Биологическая эффективность гербицидов показывает снижение численности сорняков в результате применения гербицидов (в процентах к исходной засоренности или к контролю).

Учеты проводятся перед применением гербицида, через две недели, через один месяц после обработки и перед уборкой. Учитывается видовой состав сорных растений, их число в расчете на учетную площадку, их воздушно-сухую и сырую массу. Размер учетной площадки зависит от уровня засорения.

При численности до 100 – 150 сорных растений на 1 м2 учетную площадку определяют размером1 м2, при численности от 151 до 500 сорных растений на 1 м2 ее площадь уменьшают до 0,5 м2, при численности более 500 сорных растений ее площадь определяют равной 0,25 м2.

На пропашных культурах в качестве учетной площадки выделяют 0,5 или 1 погонный метр ряда.[4][1]

На опытном и контрольном участках каждые 100 м2 площади делянок выделяют по 5 постоянных учетных площадок, располагаемых рендомизированно. Биологическую эффективность гербицидов можно рассчитать по модифицированной формуле Аббота.

В тех случаях, кода имеется контрольный участок, ее рассчитывают по учетным данным после обработки по отношению к исходной засоренности в опыте с поправкой на контроль через показатель исправленный процент гибели сорняков Сиспр. Этот показатель определяют по формуле:

Сиспр = 100 – В0 / А0 •100 • aк / bк,

где А0 – количество или биомасса сорняков на 1 м2 при определении исходной засоренности в опытном варианте;

В0 – то же во втором и последующих учетах;

– число или биомасса сорняков на 1м2 при определении исходной засоренности в контроле;

– то же во втором и последующих учетах.

В приведенной формуле отношение aк/bк и является поправкой на контроль, она вычисляется для всех вариантов опыта, относящихся к одному контролю.[4]

Эффективность фумигации складских помещений и камер с целью уничтожения амбарных вредителей определяют по смертности насекомых и клещей, помещенных в садки-изоляторы. Садки делают из тонкой металлической сетки на жестяном каркасе в виде цилиндра диаметром 3 см и высотой 20 см.

К одному концу припаяна сетка, на другой конец надевают крышечку из сетки. Вредителей размещают в садке с пищей и переносят в фумигируемое помещение до начала фумигации. В отдельный садок помещают такое же количество вредителейс пищей и располагают в нефумигируемом помещении (контроль).

Смертность насекомых в садке, подвергшихся действию фумиганта, сравнивают с контролем.[2]

Биологическую эффективность применения родентицидов в борьбе с вредными грызунами (полевки, суслики и другие мышевидные грызуны) определяют сравнением общего числа затравленных нор с числом нор, открывшихся после проведения обработки.

Читайте также:  5 лучших растений для рабочего кабинета, список с описаниями и фото

На одном участке (0,5 га на каждые 50-100 га обработанной площади) до проведения затравки прикапывают все норы и на следующий день подсчитывают все жилые, т.е. открывшиеся норы.

После затравки жилых нор их снова прикапывают и на следующий день подсчитывают число открывшихся нор.[2]

Близкие по смыслу статьи: Эффективность

Литературные источники:

1.

Бегляров Г.А, Смирнова А.А. и др. Химическая и биологическая защита растений. М.: Колос, 1983. — 351 с.

2.

Ганиев М.М., Недорезков В.Д. Химические средства защиты растений. – М.: КолосС, 2006. – 248 с.

3.

Зинченко В.А. Химическая защита растений: средства, технология и экологическая безопасность. – М.: «КолосС», 2012. – 127 с.

4.

Попов С.Я. Основы химической защиты растений. Попов С.Я., Дорожкина Л.А., Калинин В.А./ Под ред. профессора С.Я Попова. — М.: Арт-Лион, 2003. — 208 с.

5.

Хижняк П.А ., Химическая и биологическая защита растений. Под ред. канд. с.-х. наук П. А . Хижняка, М.: «Колос», 1971, 215 с. с илл.

Список всех источников

Источник: http://www.pesticidy.ru/dictionary/biological_efficiency

Биологические препараты — основа биологического земледелия

В последнее время последствия мощного антропогенного воздействия на природу стали особенно очевидными. В этой ситуации экологизация и биологизация является одним из приоритетных направлений в развитии сельскохозяйственного производства и как альтернатива его интенсивной химизации.

Не случайно, что в сентябре 2010 в Краснодаре прошла 6 –  Международная конференция по теме «Биологическая защита растений – основа фитосанитарной стабилизации агроэкосистем и экологического земледелия» в ней приняли участие 14 стран.

На конференции было подчёркнуто, что «биологическая защита растений остаётся приоритетным направлением в системе управления фитосанитарным состоянием  агроэкосистем».

Исходя из этой ситуации, курс развития земледелия в мире направлен на его биологизацию, улучшение биохимических свойств почвы путём применения биологических пестицидов,  удобрений,  стимуляторов роста.

Мировой рынок биологического метода защиты растений сосредоточен в основном  в 18 странах.

В США производится 45% общего объема нарабатываемых в мире биопестицидов и биоконтролирующих агентов, 35 % выпускается в Европе и 20% в остальных странах, включая Россию.

В настоящее время в США зарегистрировано  240 биологических препаратов, в Китае –17, в России – 33, но объём их применения невелик.

В растениеводстве удельный вес биозащиты от всех защитных мероприятий составляет около 30%.

В Январе 2011года на совещании, проходившем в Министерстве сельского хозяйства  Российской федерации, было обозначено:

Стратегический курс – БИОЛОГИЗАЦИЯ ЗЕМЛЕДЕЛИЯ!

В последнее время на рынке России начало появляться много новых биологических препаратов, поэтому в феврале 2011г. Минсельхоз провёл совещание в г. Санкт-Петербурге по теме «Микробиологические препараты: их роль в сельском хозяйстве, опыт и перспективы региональных производств»

Основным производителем биологических препаратов в России является «Россельхозцентр»

В этом свете неплохо выглядит филиал ФГУ «Россельхозцентр» по Кировской области. В 2010 г. филиалом произведено 36 тонны  биологических препаратов Планриз, Ж и Псевдобактерин 2, Ж. Это препараты на основе бактерий Псевдомонас.

Они получены из наших  почв и адаптированы к нашим природным  условиям. Этими препаратами в 2010 г. обработано в чистом виде 10,3 тыс. тонн семян, что составило 20,5% и 4,7 тыс. т баковыми смесями (химический + биологический протравители).

Всего с применением биологических препаратов было обработано 15 тыс. т семян или 28,7%  в т.ч. 10,8 тыс. т. семян яровых и 4,2 тыс. т семян озимых культур.  24,0 тыс. га посевов обработано во время вегетации в т. ч.

совместно с гербицидами в целях защиты растений от болезней и в качестве антистрессантов  при гербицидной обработке.

ПРЕИМУЩЕСТВА БИОЛОГИЧЕСКОГО МЕТОДА ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ: возможность применения против конкретного агента в конкретный период его жизни, отсутствие остатков токсических веществ и вредного воздействия на биологическую полноценность и безопасность защищаемых растений, и их урожай, безопасность для людей, занятых на работах с биопрепаратами, и экологически безопасно для окружающей среды.

Самое главное – простота применения и безопасность для человека и  окружающей среды.

При протравливании семян биологические протравители не снижают энергию прорастания, обеспечивают более раннее появление всходов и их энергичный рост, а в сочетании с химическими препаратами способны обеспечить более длительную защиту от болезней и  вредителей.

Бактерии заселяют ризосферу корней растений, обеспечивая их длительную защиту. Способствуют образованию фитостимуляторов, способствующих росту растений. (Планриз Ж)

Известно, что фосфаты используются растениями недостаточно эффективно. От 70 до 90 % из них могут оставаться в почве в невостребованном состоянии. Для их более эффективного использования есть биопрепараты, обладающие фосфатмобилизирующими свойствами, они  преобразуют фосфаты в доступную для культурных растений форму (псевдобактерин 2).

Результаты фитоэкспертизы семян, в т.ч. озимых культур, урожая 2010 г. показывают, что зараженность семян не высока.

Многие партии имеют общий процент зараженности ниже 20%,  эти партии семян в т. ч. озимых культур под урожай 2012 г. необходимо протравливать биологическими препаратами.

Применение их в этом случае эффективно, наиболее экономически целесообразно (стоимость нормы расхода  биологических препаратов Планриз и Псевдобактерин-2 составляет 27 руб./га, химических протравителей 129 – 350 руб/га).

Партии семян, где обнаружена головнёвая инфекция или зараженность выше 20%  протравливают химическими препаратами, но  наибольший эффект достигается при протравливании семян баковой смесью химических и биологических  протравителей.

Биопрепараты является хорошим антистрессантами, обладают фунгицидным и ростостимулирующим действием.

Для защиты от снежной плесени и лучшей  перезимовки посевы озимых необходимо обработать в фазу кущения осенью.

Эффективность применения биологических препаратов в области была неоднократно доказана на протяжении многих лет проведением различных демонстрационных опытов специалистами филиала ФГУ «Россельхозцентр», учёными Вятской сельхозакадемии.

Прибавка урожая озимых культур за счёт применения биологических препаратов в опытах составляла от 2,1 до 12,8 ц/га

Отличные результаты от применения биологических препаратов Планриз, Ж и Псевдобактерин 2,Ж были получены на яровых культурах.

Они стабильно обеспечивали прибавку урожая от 2 до 12 ц/га, а по некоторым вариантам прибавка достигала 19 ц/га.

<\p>

Для достижения наибольшего эффекта  от применения гербицидов их надо применять в баковой смеси с биологическими препаратами, так как бактерии, входящие в состав биологических препаратов, способны выполнять ряд полезных функций:

1. Обладают действием, снимающим гербицидный  стресс с растения.  По данным учёных (Мельникова О.В), увеличивается содержание хлорофилла в листьях  (на 0,01 – 0,05 мг/100г).

2. Повышают устойчивость растений к неблагоприятным условиям (засуха, способствуют  снижению интенсивности транспирации листьев ячменя до 33,2%,     яровой пшеницы  до 31,2% , заморозки, повышенное содержание солей, неблагоприятная реакция почвенного раствора);

3. Повышают иммунитет растений, сопротивляемость к болезням и вредителям, повышает всхожесть семян;

4. Стимулируют рост и развитие растений.

5. Обладают фунгицидным действием, то есть защищают растение от болезней, подавляют фитопатогенные микроорганизмы, снижают поражаемость растений болезнями от 1,5 до 10 раз, улучшая при этом фитосанитарную обстановку в почве;

6. Способствуют повышению качества получаемой продукции:

Обработка биологическими препаратами обеспечивает улучшение хлебопекарных качеств зерна.

В опытах проведённых  в 2009 – 2010 годах в результате обработки посевов биопрепаратами Планриз,Ж и Псевдобактерин 2,Ж содержания клейковины увеличилось на  1 – 3%, повысились натурный вес,  показатели стекловидности.

Особенно это проявляется при совместном применении гербицидов с биопрепаратами.

На этом основании необходимо все гербицидные обработки проводить с применением биологических препаратов.

Даже в экстремальных условиях 2010 года в Малмыжском районе на посевах озимой пшеницы, обработанных биологическими препаратами, получена значительная прибавка урожая по сравнению с необработанной.

С необработанных посевов получили урожай  4 – 5 ц/га. С обработанных  до 22,7 ц/га.

В 2010 году хорошие результаты показало применение биологических препаратов Планриз и Псевдобактерин  в СПК  «Красное Знамя» Куменского района на посевах ячменя сорта «Зазерский-85». В результате их применения значительно увеличилась продуктивная кустистость, от применения Планриза на 17%;   Псевдобактерина 2 на 21%. (Вставить фото снопов)

Прибавка урожая составила 8,0 и 14,1ц/га соответственно.  (Таблица 1)

В 2011 году филиал ФГУ «Россельхозцентр» по Кировской области приступил к выпуску нового биологического препарата Ризоагрин, разработанного Всероссийским научно исследовательским институтом сельскохозяйственной микробиологии Россельхозакадемии.

Этот препарат обладает свойствами фиксировать азот в прикорневой зоне злаковых культур. Биопрепарат создан на основе штамма ассоциативных бактерий (Agrobacterium radiobacter).

  Предназначен  для обработки семян злаковых культур (риса, озимой и яровой пшеницы, ржи, ячменя, овса).

Бактерии заселяют прикорневую  зону растений, выделяют питательные и росотостимулирующие вещества.

Наиболее высока и стабильна эффективность Ризоагрина на зерновых культурах.

ОСОБЕННОСТИ ДЕЙСТВИЯ РИЗОАГРИНА

1. Фиксирует атмосферный азот на корнях злаковых растений, экономит применение азотных удобрений до 40 – 60 кг/ га д.в. и обеспечивает прибавку урожая зерновых на 3 – 6 ц/га.

2. Повышает коэффициент использования минеральных удобрений и питательных элементов из почвы.

3. Стимулирует рост и развитие растений, за счёт продуцирования физиологически активных веществ, ускоряя созревание.

4. Обладает высокой конкурентноспособностью к фитопатогенным грибам, повышает устойчивость растений к болезням, улучшая, при этом, фитосанитарную обстановку в почве.

5. Усиливает устойчивость растений к неблагоприятным условиям (засуха, заморозки, повышенное содержание солей, неблагоприятная реакция почвенного раствора).

6. Регулирует накопление в растениях тяжёлых металлов, радионуклидов, нитратов и других вредных соединений.

7. Повышает содержание сырого белка в зерне на 0,5 – 1,0%

Данные по эффективности Ризоагрина

2000 – 2006 годы

Московская ТСХА

№п/п Областьхозяйство Сорт Урожай зерна ц/га Прибавка
Контроль Препарат ц/га %
Озимая пшеница
1 Смоленский ИИСХ Заря 17,6 25,9 8,3 47
2 Марий Эл, ГСХС Мироновская — 808 14,9 18,9 4,0 26,8
3 Краснодар Яшма 29,5 34,5 5,0 16,9
Яровая пшеница
1 Марий Эл, ГСХС Симбирка 18,0 19,7 1,7 9,6
2 Рязанский НИПТИ АПК Симбирка 16,0 18,6 2,6 16
3 Московская ТСХА Иволга 21,8 29,6 7,8 35,8
4 Тверь Крепыш 30,2 33,1 2,9 9,6
5 АлтайскийНИИЗС с/х Алтайская — 88 22,4 25,0 2,6 11,6
Алтайская — 92 22,2 24,8 2,6 11,7
6 Белгородская ГСХА Симбирка 14,8 17,4 2,6 17,6

В опыте, заложенном в СПК «Красное знамя» Кумёнского района Кировской области на яровой пшенице сорта «Иргина» высота растений в обработанном варианте на 4 – 5 см выше контроля, увеличился вес одного растения, увеличилось количество продуктивных стеблей.

(Фото посевов обработанных ризоагрином)

Сейчас идёт подготовка к севу озимых культур. Опыты, проведённые в ряде регионов, показывают —  наибольший эффект от применения Ризоагрина получается при обработке озимых зерновых.

По этому  рекомендуется его применение на обработку семян озимых зерновых культур. Стоимость обработки гектарной нормы семян составляет 54 руб.   Срок хранения препарата до 50 дней.

Читайте также:  Джем из голубики, пошаговый рецепт с фото

Препарат не токсичен, безопасен для теплокровных животных, птиц, рыб, насекомых.

На основании результатов многолетних опытов, проводимых в области и других регионах, по применению биологического метода защиты растений,  его необходимо шире внедрять  на территории  нашей области.

Зам руководителя филиала

ФГУ «Россельхозцентр» по

Кировской области

А.В. Грязнов

Источник: http://www.kleverkirov.ru/index.php/metodicheskie-rekomendatsii/resursosberegayushchie-tekhnologii-v-rastenievodstve/515-2015-10-19-21-13-36?showall=1&limitstart=

Оценка биологической активности промышленных гуминовых препаратов*

АГРОХИМИЯ, 2012, № 6, с. 45-52

Регуляторы роста растений

УДК 631.811.98

ОЦЕНКА БИОЛОГИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ ПРОМЫШЛЕННЫХ

ГУМИНОВЫХ ПРЕПАРАТОВ*

© 2012 г. Л.П. Воронина1, О.С. Якименко1, В.А. Терехова1' 2

Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, факультет почвоведения 119992 Москва, Ленинские горы, 1, стр. 12, Россия E-mail: luydavoron@yandex.ru 2Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН 119071 Москва, Ленинский просп., 33, Россия

Поступила в редакцию 18.08.2011 г.

Обсуждены способы оценки биологической активности гуминовых препаратов в связи с актуальностью проблемы их сертификации. Приведены данные лабораторного фитотестирования двух гуминовых препаратов (ГП) разного генезиса с применением семян двудольных растений.

Обосновано использование интегрального индекса фитоактивности (ИФ) ГП, отражающего энергию прорастания, длину корня и высоту колеоптиля проростков семян для оценки биоактивности и качества ГП.

Ключевые слова: биологическая активность, промышленные гуминовые препараты, фито-тестирование.

ВВЕДЕНИЕ

Препараты на основе гуминовых веществ с конца ХХ века занимают все большее место в разработке современных инновационных технологий не только в области растениеводства и животноводства, но и в медицине и природоохранной сфере.

В современном растениеводстве гуминовые препараты (ГП) применяют в целях стимуляции роста и развития растений и как вещества, обладающие биопротекторными свойствами. Они улучшают усвоение растениями питательных элементов, повышают устойчивость растений к климатическим и биотическим стрессорам и т. п.

Поскольку большая часть препаратов позиционируется в качестве регуляторов роста растений, то для оценки физиологической активности ГП представляется логичным использование фитотестирования. При фитоте-стировании, как правило, определяют всхожесть, энергию прорастания, длину корней и колеоптилей проростков семян высших растений [1].

Чаще всего используют экспрессную методику фитотестирова-ния для суммарной экологической оценки почв аг-роценоза [2]. В ходе исследования таким способом для различных образцов устанавливают не только

* Работа частично поддержана РФФИ и ФЦП «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» (ГК 14.740.11.0796).

эффекты, стимулирующие развитие растений, но и подавление тех или иных их тест-функций. С точки зрения обсуждаемой в настоящее время проблемы сертификации промышленных гуматов [3-4], такая информация крайне необходима для оценки качества выпускаемых гуминовых продуктов.

Проявления биологической активности ГП по отношению к двудольным растениям обычно выражаются в виде ауксинподобного эффекта: стимулирование в низких концентрациях и ингибирование -в высоких, т. е. для ГП характерно бимодальное воздействие [5-8].

При этом на тест-отклики значительно влияют не только условия эксперимента (температура, освещенность, обеспеченность среды питательными элементами и прочее), но также вид и сорт тест-культуры.

Например, сортовые различия в чувствительности показаны для кунжута: для одного сорта наблюдали прирост урожайности до 110-130%, для другого — снижение до 85% относительно контроля [9].

Однако стандартной методики фитотестиро-вания ГП, позволяющей выявить как уровень их физиологической (или биопротекторной) активности, так и экотоксичности не существует [10]. В научной и учебно-практической литературе можно найти немало методических рекомендаций различных вариантов применения в фитотестах семян разных видов высших растений. Согласно

[11], в лабораторных фитотестах следует применять семена овса (Avena spp.), поскольку они, по мнению разработчиков, давали наиболее стабильные и воспроизводимые результаты по сравнению с семенами других культур (рр. Pisum, Cucumis, Triticum, Daucus и др.). В разработанной методике по определению суммарной токсичности объектов агроценоза [12] обосновано использование семян редиса (р.

Raphanus), которые обладают «высокой степенью отзывчивости на токсические вещества». За рубежом и во многих работах отечественных авторов показана эффективность применения мелких семян культурных растений, в частности кресс-салата Lepidium sativum.

Этот вид растений показал свою информативность при анализе загрязнений как отдельными типами пол-лютантов, так и при их воздействии в комплексе [13-15]. Согласно международному стандарту ISO 11269-1, для биотестирования рекомендуется использовать ячмень обыкновенный (Hordeum vulgare) сорта CV Triumph. Одновременно оговорено, что можно применять и другие виды семян.

Международный стандарт ISO 11269-2 предписывает выбирать как минимум 2 вида растений, при этом один вид должен принадлежать к классу однодольных, другой — двудольных [16].

Что касается фитотестирования ГП, то в этом случае выбор тест-растения особенно важен, поскольку стимулирующий эффект может быть вызван как полифункциональностью самой молекулы препарата, так и воздействием его отдельных фракций, проявляющих гормональное действие, а рост ювенильных растений в зависимости от типа прорастания происходит у разных видов растений по-разному [17]. При этом процессы ризогенеза и морфофизиологического преобразования тканей очень чувствительны к любым флуктуациям среды, что, как правило, и проявляется при фитоте-стировании ГП [18].

Помимо этого, самым существенным и дискуссионным моментом в организации и проведении фитотестирования является неоднозначность проявления различных тест-функций в ответ на воздействие одной и той же пробы испытуемого образца. Эффекты при фитотестировании образцов оценивают, как известно, либо по величине отдельных параметров, либо при их сочетании.

Наиболее чувствительным является показатель длины корней растений. Высокая «отзывчивость» длины корней проростков была подтверждена и в экспериментах по изучению влияния избытка биогенных элементов (фосфора и калия) в почво-грунтах на развитие семян горчицы белой (Sinapis alba), тогда как наименее чувствительным параметром оказалась всхожесть семян [19].

Практически во всех работах иностранных авторов по

фитотестированию различных образцов длина корней служит тест-параметром [20, 21], во многих случаях — в сочетании с высотой проростков, колеоптилей [22, 23] или с показателями всхожести [24, 25].

Длина корней проростков представляется значимым показателем для определения активности ГП, поскольку многие авторы описывают их стимулирующий эффект на развитие корневой системы ювенильных растений, связывая его с ауксиноподобным фитогормональным действием [5, 7, 26].

Тем не менее именно комплекс вышеуказанных показателей, вероятно, будет наиболее адекватно отражать фитоактивность ГП.

В данной работе приведены экспериментальные данные по испытанию действия некоторых промышленных ГП на семена двудольных растений, наиболее часто применяемых для оценки фитотоксичности и стимуляции роста растений.

На основании проведенного анализа литературы и собственного опыта для оценки качества ГП авторы сочли целесообразным в качестве тест-параметров использовать комбинацию показателей всхожести, длины корня и высоты проростка.

Цель работы — экспериментальное обоснование пригодности обобщенного индекса фитоактив-ности и отдельных параметров фитотест-систе-мы, основанной на «откликах» проростков семян двудольных растений, для оценки биологической активности ГП.

МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ

В фитотестах использовали водные растворы двух ГП — препаратов ВС-Нит№ и Le-PHumK. Препараты представляли собой гуматы натрия или калия, полученные промышленным способом из бурого угля или леонардита и рекомендуемые производителями в качестве регуляторов роста растений.

Градиент концентраций в опытах включал диапазон от 0 до 1000 мг/л, испытанные концентрации препаратов составляли 0, 10, 100 и 1000 мг/л; в качестве контроля использовали дистиллированную воду.

Препарат Le-PHumK практически полностью растворим в воде, растворимость ВС-Нит№ составляет около 90%, и его вносили в виде суспензии. Величина рН растворов 6.2-8.

4 находилась в допустимых пределах для использованной тест-культуры, что не вызывало необходимости дополнительной процедуры выравнивания величин рН, как это рекомендовано некоторыми стандартными методиками биотестирования.

Исследования проводили на проростках семян редиса Raphanus sativus L. сорта Вюрцбургский -представителя двудольных растений. Семена пред-

варительно проверяли на всхожесть, для опытов отбирали партии со всхожестью семян не менее 90%.

Семена помещали в сосуды (по 25-40 шт.), заливали водой или тестируемыми растворами ГП так, чтобы над поверхностью семян оставался слой жидкости 7-10 мм, и 1 сут выдерживали в термостате при 26°С.

На дно каждой чашки помещали по 2 диска бумажных фильтров и увлажняли их 7 мл раствора ГП или дистиллированной водой (контроль), затем на фильтры выкладывали семена редиса по 10 шт. в чашке.

Семена в увлажненных камерах экспонировали 72 ч в термостате при 26°С в темноте.

Биологическую активность ГП оценивали по трем тест-функциям — энергии прорастания семян (ЭП), длине корней (ДК) и высоте проростков (ВП) через 96 ч от начала эксперимента. Опыты повторяли дважды в течение 2 мес.

В каждом опыте анализ проводили в 3-х повторностях, всего проанализировано не менее 80 растений в каждом из вариантов. Статистическую обработку данных проводили с использованием программ Statistica-8.

0 и Microsoft Office Excel 2007.

Для формализации полученных величин тест-функций рассчитывали интегральный индекс

фитоактивности (ИФ) ГП, который отражал отклонения величины тест-функции от контроля (проращивания в воде).

ИФ вычисляли как среднее суммы показателей ЭП, ДК и ВП, выраженное в долях единицы:

(ЭП + ДК + ВК)

ИФ = ■

3 ■ 100

где ЭП, ДК и ВП — средние величины соответствующих показателей из двух опытов (% к контролю).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Оба ГП проявили биоактивность по отношению к семенам редиса, причем полученные результаты различались не только в зависимости от вида ГП, но и для каждого препарата в ходе 2-х опытов. Статистическая обработка результатов каждой из изученных тест-функций позволила выявить досто

Для дальнейшего прочтения статьи необходимо приобрести полный текст. Статьи высылаются в формате PDF на указанную при оплате почту. Время доставки составляет менее 10 минут. Стоимость одной статьи — 150 рублей.

Источник: http://naukarus.com/otsenka-biologicheskoy-aktivnosti-promyshlennyh-guminovyh-preparatov

Биологические препараты, их классификация, правила транспортировки, хранения и оценка пригодности для использования

Биологические препараты — средства биологического происхождения, применяемые в профилактических, диагностических и лечебных целях. Промышленность выпускает также и стимулирующие биопрепараты: иммуностимуляторы, кормовые антибиотики, гормоны, витамины.

Средства иммунопрофилактики. К ним относят вакцины, глобулины сыворотки. Основные показатели хорошего качества всех профилактических препаратов — стерильность или чистота (отсутствие контаминантов), безвредность, допустимая степень реактогенности, антигенная активность и иммуногенность, эпизоотическая эффективность.

Штаммы микроорганизмов, применяемые для изготовления вакцин, должны быть классифицированы, клонированы и представлять собой однородную популяцию микроорганизмов с характерными морфологическими, биохимическими и антигенными признаками.

Живые вакцины содержат культуру микроорганизмов аттенуированного штамма, сохранивших высокую иммуногенность с генетически закрепленной пониженной вирулентностью.

Получают методом направленного изменения свойств возбудителя под воздействием внешней среды (вакцины против сибирской язвы, туберкулеза, бруцеллеза) или путем пассажей через организм невосприимчивых животных (вакцины против бешенства, рожи свиней).

Живые вакцины наиболее перспективны для ветеринарной практики, так как иммунитет после их применения образуется, как правило, раньше и характеризуется большей напряженностью и длительностью.

Инактивированные вакцины содержат культуру микроорганизмов определенного вида, обезвреженных действием физико-химических факторов (высокая температура, ультрафиолет, фенол, формалин) и утративших способность к репродуцированию (без убого разрушения клетки микроорганизма, с сохранением иммуногенных свойств возбудителя). Инактивированные вакцины по иммуногенности уступают живым, поэтому их вводят в больших дозах и многократно. Чтобы повысить иммунологическую эффективность инактивированных вакцин, используют депонирующие вещества (адъюванты), которые по механизму действия на антиген делят на сорбирующие и эмульгирующие.

Анатоксины— вид вакцин, применяемых для активной профилактики токсикоинфекций животных. Получают методом обезвреживания бактерийных экзотоксинов 0,3…0,4%-м формалином с выдерживанием при 38…40 «С в течение трех-четырех недель.

Анатоксины стимулируют синтез антитоксинов, которые, нейтрализуя экзотоксины возбудителя, не оказывают губительного действия на него самого.

Читайте также:  7 способов быстрого озеленения участка, растения, советы, секреты, фото

Широко используют поливалентный анатоксин против клостридиозов овец — инфекционной энтеротоксемии, брадзота, некротического гепатита,  злокачественного отека овец и дизентерии ягнят.

Вакцины нового поколения — субъединичные, генно-инженерные — созданы с помощью методов биотехнологии.

По технологии изготовления вирусные вакцины делят на тканевые культуральные (лапинизированные) и эмбриональные — изготовленные из различных тканей животных, организм которых был использован в качестве среды размножения возбудителя.

В зависимости от примененного инактиватора все вакцины подразделяют на феноловые, формоловые, спиртовые, гретые; от добавленного адъюванта — на квасцовые (адсорбированные на алюмокалиевых квасцах), гидроокисьалюминиевые и масляные.

В зависимости от количества антигенов вакцины подразделяют на моновалентные — содержащие один антиген одного штамма (серотипа, биотипа) возбудителя данной болезни; поливалентные — содержащие антигены различных серотипов (биотипов, штаммов) возбудителя данной болезни; ассоциированные — содержащие антигены возбудителей нескольких заболеваний;

Аутогенные — приготовленные из штамма микроорганизма, выделенного от больного животного, и для него же предназначенные.

Кроме того, выпускают вакцины жидкие и сухие — изготовленные в основном из живых слабоустойчивых штаммов, высушенные в условиях глубокого вакуума после предварительного замораживания (лиофилизация) или другим методом.

Прививки бывают профилактические (плановые) и вынужденные (при угрозе заноса возбудителя инфекции в хозяйство или появлении в хозяйстве инфекционной болезни).

Противопоказаниями против прививок служат: наличие в хозяйстве остроинфекционных болезней, а также переболевших животных (реконвалесцентов), истощенных или животных с повышенной температурой тела; неблагоприятные погодные условия;

Стресс-факторы; последняя стадия беременности, первые 2 нед после родов; прививки другой вакциной.

Неспецифический нормальный глобулин содержит комплекс у — и Р-глобулинов. Стимулирующе действует на организм животных, повышая его общую устойчивость к неблагоприятным факторам внешней среды.

Лечебные и диагностические препараты.

К средствам специфической терапии относят гипериммунные сыворотки (по механизм действия делят на антитоксические, антибактериальные и противовирусные), сыворотки реконвалесцентов, иммуноглобулины, бактериофаги, антибиотики, пробиотики. Для диагностических целей в ветеринарии используют сыворотки, иммуноглобулины, аллергены, бактериофаги, антигены, моноклональные антитела.

Антибактериальные сыворотки воздействуют непосредственно на возбудителя заболевания, подавляя его жизнедеятельность. Биопромышленность нашей страны выпускает сыворотки против сибирской язвы, рожи свиней, пастереллеза и др.

Антитоксические сыворотки содержат антитела (иммуноглобулины), способные специфически связывать и нейтрализовывать токсины бактериального, растительного и животного происхождения. В ветеринарии применяют антитоксические сыворотки против анаэробной дизентерии и инфекционной энтеротоксемии овец, столбняка, ботулизма, злокачественного отека и др.

Противовирусные сыворотки высокоэффективны, особенно в начале заболевания. Биопромышленность выпускает сыворотки против болезней крупного рогатого скота (ринотрахеит, вирусная диарея и др.), собак (чума, гепатит, энтерит).

Лечебные, профилактические и диагностические гипериммунные сыворотки обычно получают от лошадей, иногда — от волов, свиней.

После окончания гипериммунизации, когда в сыворотке крови животного установлено максимальное содержание специфических антител, у животного берут кровь (чаще на 7…10-й день после последнего введения антигена).

Кровь сепарируют, чтобы получить нативную плазму (сыворотку), которую отстаивают и стабилизируют (консервируют), затем концентрируют, стандартизируют, стерилизуют фильтрацией и при необходимости прогревают.

После производственного контроля каждую серию сыворотки проверяют на стерильность, безвредность, специфическую активность.

На бактериальную стерильность контролируют высевами из препарата на специальные питательные среды (МПА, МПБ с глюкозой, МППБ под маслом и агар Сабуро или среду Чапека, чтобы исключить контаминацию грибковой микрофлорой).

Безвредность проверяют на лабораторных животных в соответствии с нормативной документацией по изготовлению сыворотки. Животные должны оставаться здоровыми, без заметной местной и общей реакции в течение 10 дней.

Специфическую активность определяют в реакциях биологической и серологической нейтрализации.

Реакцию биологической нейтрализации ставят на восприимчивых лабораторных животных, эмбрионах птиц или культурах клеток. Для серологического тестирования применяют РН, РДП в агаровом геле, РТГА, РСК, РНГА и др.

с использованием в качестве контроля заведомо известных позитивных и негативных сывороток (референс-препаратов).

Кроме того, проверяют превентивные свойства лечебных и профилактических сывороток на восприимчивых животных. Чтобы определить активность сыворотки, ее вводят животным внутрибрюшинно, подкожно или внутримышечно.

Затем через 20…24 ч инъецируют подтитрованную дозу вирулентного контрольного штамма соответствующего микроорганизма.

Подопытные животные должны оставаться здоровыми не менее 14 дней, контрольные— погибнуть или заболеть.

Сыворотки реконвалесцентов (противовирусные и антибактериальные) получают от животных, переболевших инфекционной болезнью без осложнений. Сыворотку рекомендуют получать и использовать в условиях одного хозяйства.

Кровь от животных-доноров можно брать непосредственно в хозяйстве или на мясокомбинате во время их убоя.

Сыворотки реконвалесцентов применяют при парагриппе, вирусной диарее крупного рогатого скота, сальмонеллезе, пастереллезе и т. д.

Лечебные глобулины (против болезни Ауески сельскохозяйственных животных и пушных зверей, сибирской язвы) представляют собой водный раствор у — и р-глобулинов сыворотки крови животных. Иммуноглобулины получают различными методами (риваноловым, спиртовым и путем осаждения сульфатом аммония) из гипериммунных сывороток.

Бактериофаги—вирусы, которые проникают в бактериальную клетку, размножаются в ней и лизируют ее с выходом фаговых частиц в окружающую среду. Бактериофаги способны лизировать только определенные микроорганизмы.

Введенный в организм бактериофаг сохраняется в нем 5…7 дней (прием бактериофага не может заменить вакцинацию).

В нашей стране выпускают бактериофаги против сальмонеллеза или колибактериоза телят, пуллороза — тифа птиц.

Для идентификации возбудителей болезней в бактериальных культурах и свежем патологическом материале биопромышленность выпускает: сибиреязвенный бактериофаг К—ВИЭВ. «Гамма—МВА», ВНИИВВиМ, лиофилизированные бактериофаги для идентификации возбудителей листериоза, стафилококковые — для типирования штаммов; бруцеллезный бактериофаг.

Диагностические сыворотки используют не только для идентификации возбудителя инфекции, но и для определения его типа и варианта. Производство диагностических сывороток строго регламентировано, что обусловливает их высокое качество и стандартность. В большинстве случаев продуцентами названных сывороток служат лабораторные животные (кролики, морские свинки), петухи и редко—лошади.

Глобулин диагностический (для диагностики бешенства в пряпом методе иммунолюминесцентной микроскопии) —это чистая у-глобулина, выделенного из высокоактивной моноспецифической антирабической сыворотки лошадей и химически вязанного с изотиоцианатом флуоресцина. А/глергены представляют собой фильтрат убитых бактериальных клеток или извлеченных из них активных фракций: туберкулин  очищенный (ППД) для млекопитающих, ППД для птиц, комплексный аллерген из атипичных микобактерий (КАМ); бруцетин ВИЭВ; маллеин.

Аллергическая диагностика основана на повышенной специфической чувствительности зараженного организма к определенным аллергенам — веществам бактериального происхождения, введение которых одним из методов (внутрикожно, подкожно или на слизистую оболочку глаза) больному животному, особенно в латентный период, вызывает местную реакцию.

Антигены— это вещества, способные при введении в организм вызывать в нем иммунологические реакции: синтез антител, формирование клеточной гиперчувствительности и др. Антиген реагирует с образовавшимися антителами как в живом организме, так и в пробирке.

Для серологических реакций выпускают: единый бруцеллезный антиген для РА, РСК и РДСК; бруцеллезный Розбенгал антиген; паратуберкулезный, листериозный, сапной, кампилобакте-риозный, лептоспирозный антигены и т. д.

Правила транспортировки биопрепаратов. Поскольку качество биопрепаратов снижается и даже полностью теряется при промерзании, под воздействием высокой температуры, повышенной влажности, прямого солнечного света, биопрепараты нужно как транспортировать, так и хранить в соответствующих условиях (очень важно это соблюдать по отношению к живым, особенно жидким, вакцинам).

Источник: https://veterinarua.ru/epizootologiya1/1329-biologicheskie-preparaty-ikh-klassifikatsiya-pravila-transportirovki-khraneniya-i-otsenka-prigodnosti-dlya-ispolzovaniya.html

Пищевая и биологическая ценность

Пищевая ценность — комплекс свойств пищевых продуктов, обеспечивающих физиологические потребности человека в энергии и основных пищевых веществах.

Биологическая ценность – комплекс свойств пищевых продуктов, отражающий степень соответствия их состава потребностям организма в основных биологически активных веществах.

Наряду с вышеназванными определениями биологическая и пищевая ценность вводятся дополнительно понятия «биологическая эффективность» и «энергетическая ценность» с целью характеристики ценности жиров, а также калорийности пищи.

Биологическая эффективность — показатель качества жировых компонентов пищевых продуктов, отражающий содержание в них полиненасыщенных жирных кислот.

Энергетическая ценность — количество энергии (ккал, кДж), высвобождаемой в организме человека из пищевых веществ продуктов питания для обеспечения его физиологических функций.

Биологическая ценность продуктов питания отражает, прежде всего, качество белкового компонента пищи, связанного со сбалансированностью его аминокислотного состава, а также способность его максимально перевариваться и усваиваться организмом.

Мясо рыб является не только источником полноценного белка, но и способствует улучшению общего аминокислотного состава рациона при потреблении совместно с продуктами растительного происхождения, для которых характерен дефицит лизина, треонина и триптофана.

Биологическая эффективность липидов рыбы и других гидробионтов определяется наличием в них фосфолипидов, полиненасыщенных жирных кислот и витаминов. Важным показателем при биологической оценке липидов является отношение суммарного содержания полиненасыщенных жирных кислот и насыщенных жирных кислот, которое должно составлять в пище здорового человека не менее 0,3.

Полиненасыщенные жирные кислоты обеспечивают эффективный липидный обмен, проницаемость клеточных мембран и снижение уровня холестерина в крови, что позволяет отнести мясо рыбы к диетическим и лечебно профилактическим продуктам. Липиды практически всех водных животных являются биологически эффективными.

В связи с тем, что углеводы присутствуют в съедобных частях тела рыбы в незначительных количествах, они мало влияют на ее энергетическую ценность. Однако они входят в состав некоторых биологически активных веществ.

Аминосахара и содержащие их полимеры обладают высокой биологической активностью.

Они оказывают ингибирующее действие на различные новообразования, их применяют при лечении атеросклероза, гипертонической болезни и других заболеваний.

Мясо рыбы является ценным компонентом рациона как источник водо- и жирорастворимых витаминов, минеральных веществ.

Для определения энергетической ценности продуктов питания, то есть количества тепла, которое может быть получено в человеческом организме при окислении белков, липидов и углеводов, содержащихся в 100 г продукта, используют следующую формулу:

К=Б*Эб*Кб+Ж*Эж*Кж+У*Эу*Ку

где: К — энергетическая ценность (калорийность) в пересчете на 100 г продукта, кДж или ккал;

Б, Ж и У— содержание соответственно белка, жира и углеводов в продукте, г/100 г;

Эб, Эж, Эу  — энергетическая ценность соответственно белка (17,1 кДж или 4,1 ккал), жира (38,9 кДж или 9,3 ккал) и углеводов (17,1 кДж или 4,1 ккал);

Кб, Кж и Ку — коэффициенты усвояемости соответственно белка, жира и углеводов.

В том случае, если определяется энергетическая ценность рыбы, то содержание в ней углеводов условно принимают равным нулю, а коэффициенты усвоения белка и жира в среднем составляют 0,96 и 0,91 соответственно.

При расчете калорийности продуктов питания содержащих растительные компоненты, следует учитывать, что в состав углеводов могут входить неусвояемые вещества (клетчатка, пектины, агар и др.), которые могут доминировать в продукте. В этом случае коэффициент усвоения углеводов может варьировать в очень широких пределах, но для большинства пищевых продуктов его принимают около 0,98.

Источник: http://tehnologist.ru/poleznaya-informacziya/pishhevaya-i-biologicheskaya-czennost

Ссылка на основную публикацию